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SEXAGEM DE AVES ATRAVÉS DE ADN
Há mais de 10 anos que somos especialistas na determinação do sexo de aves com base em amostras de sangue, penas ou cascas de ovos. No nosso laboratório de última geração especializado em Biologia Molecular, já testámos mais de 1000 espécies de aves até agora e continuamos a expandir a nossa experiência. Por favor, consulte a nossa lista de espécies de aves para verificar se já testámos a espécie específica da sua ave anteriormente.
Para definir o sexo da sua ave, pode optar por nos enviar:- Amostras de sangue
- Amostras de penas
- Amostras de cascas de ovos
Receberá os resultados dos testes dentro de 2 a 3 dias úteis a partir do recebimento do DNA da ave, juntamente com um cartão de identidade gratuito para cada ave que sexar connosco!
Se não souber como recolher as suas amostras, consulte a nossa página de como fazer a recolha. Se não tiver a certeza de como encomendar o teste de determinação do sexo da sua ave, consulte a nossa página de como encomendar.
Porque escolher a STAB VIDA?- Certificação ISO 9001
- Resultados disponíveis em 2-3 dias úteis
- Garantia de qualidade, os resultados são sempre verificados duplamente
- Certificado eletrónico gratuito, descarregável e imprimível
- Certificado em papel especial com selo branco também disponível
- Criar a sua área pessoal no nosso site permite-lhe seguir o estado de todas as suas amostras
- Cartão de identidade gratuito para a ave
- Serviço pessoal, chat online disponível
- Não é necessária intervenção cirúrgica, como anestesia
- Aplicável a aves de qualquer idade, em qualquer época do ano
- As aves não são submetidas ao stress do transporte
- Método fiável aplicável à maioria das espécies
No laboratório da STAB VIDA, especialistas trabalham diariamente na Identificação do Sexo de Aves. A Identificação do Sexo de Aves é um serviço que requer precisão consciente, responsabilidade e uma sólida base científica. Os nossos especialistas, com vários anos de experiência em trabalhar com ADN animal, atuam no nosso laboratório de última geração especializado em Biologia Molecular.
O método de identificação do sexo de aves através de ADN baseia-se nas diferentes composições dos cromossomas sexuais das aves entre machos e fêmeas. O macho possui dois cromossomas sexuais iguais: o cromossoma Z. Por outro lado, a fêmea possui dois cromossomas diferentes: os cromossomas Z e W. Os cromossomas Z e W têm tamanhos diferentes, permitindo observar diferentes ligações entre os dois sexos. Assim, a distinção entre macho e fêmea torna-se efetiva: o macho possui uma única banda (correspondente a dois cromossomas Z), enquanto as fêmeas têm duas bandas (correspondentes aos cromossomas Z e W).
A extensa base de dados de ADN presente na STAB VIDA permite sempre que cada resultado seja comparado com aves da mesma espécie e sexo conhecido.
Lista de Espécies de Aves
A nossa lista de espécies de aves continua a crescer! Abaixo, encontrará a lista de espécies de aves que testámos até agora. Se clicar numa espécie de ave na lista, encontrará uma imagem da espécie juntamente com alguns factos adicionais.
A sua espécie de ave não está na nossa lista?
Passo 1: Envie-nos uma amostra mestre de uma ave da mesma espécie, preferencialmente de uma ave fêmea.
Passo 2: Envie-nos as amostras das aves que pretende sexar.
Não há custos adicionais além da determinação do sexo da sua ave!
Por favor, não hesite em contactar-nos se precisar de ajuda adicional!
| Nome Científico |
|---|
| Aburria cumanensis |
| Accipiter nisus |
| Accipter gentilis |
| Acridotheres cristatellus |
| Acridotheres Fuscus |
| Acridotheres ginginianus |
| Acridotheres tristis |
| Acryllium vulturinum |
| Aegypius monachus |
| Agapornis |
| Agapornis fischeri |
| Agapornis lilianae |
| Agapornis nigrigenis |
| Agapornis personatus |
| Agapornis roseicollis |
| Agapornis taranta |
| Alauda arvensis |
| Alectoris chukar |
| Alectoris graeca |
| Alisterus amboinensis |
| Alisterus scapularis |
| Amazona aestiva |
| Amazona aestiva aestiva |
| Amazona aestiva xanthopteryx |
| Amazona albifrons |
| Amazona amazonica |
| Amazona auropalliata |
| Amazona autumnalis |
| Amazona autumnalis lilacina |
| Amazona autumnalis mexicana |
| Amazona barbadensis |
| Amazona brasiliensis |
| Amazona cubano |
| Amazona dufresniana |
| Amazona farinosa |
| Amazona farinosa guatemalae |
| Amazona festiva |
| Amazona festiva bodini |
| Amazona finschi |
| Amazona leucocephala |
| Amazona muller |
| Amazona ochrocephala |
| Amazona ochrocephala panamensis |
| Amazona oratrix |
| Amazona oratrix tresmariae |
| Amazona parvipes |
| Amazona pretrei |
| Amazona rhodocorytha |
| Amazona tresmariae |
| Amazona tucumana |
| Amazona ventralis |
| Amazona vinacea |
| Amazona viridigenalis |
| Amazona xanthops |
| Anodorhynchus hyacinthinus |
| Anthropoides virgo |
| Aplopelia larvata |
| Aprosmictus erythropterus |
| Ara ararauna |
| Ara ararouca |
| Ara auricollis |
| Ara chloroptera |
| Ara couloni |
| Ara glaucogularis |
| Ara hyacinthinus |
| Ara macao |
| Ara maracana |
| Ara militaris |
| Ara nobilis |
| Ara rubrugena |
| Ara severus |
| Aramides ypecaha |
| Arara Jacinta |
| Arara-catalina |
| Aratinga acuticaudata |
| Aratinga aurea |
| Aratinga auricapilla |
| Aratinga auropalliata |
| Aratinga canicularis |
| Aratinga erythrogenys |
| Aratinga finschi |
| Aratinga jandaya |
| Aratinga leucophthalma |
| Aratinga mitrata |
| Aratinga nanday |
| Aratinga pertinax |
| Aratinga rubritorquis |
| Aratinga solstitialis |
| Aratinga wagleri |
| Aratinga weddellii |
| Arborophila gingica |
| Ardeola speciosa |
| Argusianus argus |
| Astrild cyanocephale |
| Athene noctua |
| Balearica pavonina |
| Balearica regulorum |
| Barnardius barnardi |
| Barnardius zonarius |
| Barnardius zonarius semitorquatus |
| Boissonneaua jardini |
| Bolborhynchus lineola |
| Bombycilla cedrorum |
| Bostrychia hagedash |
| Branta leucopsis |
| Brotogeris sanctithomae |
| Brotogeris tirica |
| Brotogeris versicolurus |
| Bucorvus leadbeateri |
| Burhinus oedicnemus |
| Cacatua alba |
| Cacatua ducorpsii |
| Cacatua galah |
| Cacatua galerita |
| Cacatua galerita eleonora |
| Cacatua goffini |
| Cacatua leadbeateri |
| Cacatua Moluccensis |
| Cacatua sanguinea |
| Cacatua sulphurea |
| Cacatua sulphurea citrinocristata |
| Cacatua sulphurea parvula |
| Cacatua tenuirostris |
| Caloenas nicobarica |
| Caloenas nicobarica |
| Calyptorhynchus banksii |
| Carduelis atrata |
| Carduelis carduelis |
| Carduelis chloris |
| Carduelis cucullatus |
| Carduelis flammea |
| Carduelis flavirostris |
| Carduelis hornemanni |
| Carduelis magellanica |
| Carduelis major |
| Carduelis spinus |
| Carduelis tristis |
| Cariama cristata |
| Caropsis migra |
| Carpodacus mexicanus |
| Catreus wallichii |
| Chaetura meridionalis |
| Chaetura meridionalis |
| Chalcophaps chrysochlora |
| Chalcophaps indica |
| Chalcopsitta atra |
| Chalcopsitta cardinalis |
| chalcopsitta duivenbodei |
| Chalcopsitta scintillata |
| Chalcopsitta scintillata rubrifons |
| Charadrius hiaticula |
| Charmosyna papou goliathina |
| Chauna torquata |
| Chloris chloris |
| Ciconia nigra |
| Cinnyricinclus leucogaster |
| Cochlearius cochlearius |
| Colius striatus |
| Columba arquatrix |
| Columba corensis |
| Columba guinea |
| Columba larvata |
| Columba larvata |
| Columba livia |
| Columba maculosa |
| Columba maculosa albipennis |
| Columba minuta |
| Columba oenas |
| Columba oenops |
| Columba palumbus |
| Columba picazuro |
| Columba picturata |
| Columbina cruziana |
| Columbina squammata |
| Columbina talpacoti |
| Conur mandayus menday |
| Coracias cyanogaster |
| Coracias garrulus |
| Coracias naevieus |
| Coracopsis nigra |
| Coracopsis vasa |
| Coracya cyanogaster |
| Coragyps atratus |
| Corvus albus |
| Corvus corax |
| Coscoroba coscoroba |
| Cosmopsarus regius |
| Cossypha niveicapilla |
| Creatophora cinerea |
| Crossoptilon auritum |
| Crossoptilon crossoptilon |
| Crossoptilon mantchuricum |
| Cyanocompsa brissonii |
| Cyanocompsa brissonni |
| Cyanoliseus patagonus |
| Cyanopica cyanus |
| Cyanoramphus novaezeleandiae |
| Cygnus atratus |
| Cygnus melanocoryphus |
| Cygnus olor |
| Dacelo novaeguineae |
| Dendrocopos major |
| Dendrocygna arborea |
| Deroptyus accipitrinus |
| Dinemellia dinemelli |
| Diopsittaca nobilis |
| Diuca diuca |
| Dromaius novaehollandiae |
| Ducula pistrinaria |
| Ducula rosacea |
| Ducula spilorrhoa |
| Duteo buteo |
| Egretta novaehollandiae |
| Elanus caeruleus |
| Emblema guttata |
| Eolophus roseicapillus |
| Eos bornea |
| Eos reticulata |
| Eos squamata obiensis |
| Erithacus rubecula |
| Erythrura cyaneovirens |
| Erythrura gouldiae |
| Erythrura Psittacea |
| Erythrura trichroa |
| Estrilda caerulescens |
| Estrilda melpoda |
| Estrilda rhodopyga |
| Estrilda troglodytes |
| Eudocimus albus |
| Eudocimus ruber |
| Eudromia elegans |
| Falco femoralis |
| Falco peregrinus |
| Falco rusticolus |
| Falco vespertinus |
| Forpus coelestis |
| Forpus xanthopterygius |
| Galinholas |
| Gallicolumba criniger |
| Gallicolumba luzonica |
| Gallicolumba rufigula |
| Gallicolumba tristigmata |
| Garrulax canorus |
| Garrulus glandarius |
| Geopelia cuneata |
| Geopelia humeralis |
| Geopelia maugei |
| Geopelia placida |
| Geopelia striata |
| Geophaps lophotes |
| Geotrygon versicolor |
| Geotrygon versicolor |
| Geronticus calvus |
| Geronticus eremita |
| Gibber italicus |
| Goura cristata |
| Goura victoria |
| Goura victoria |
| Gracula religiosa |
| Gracula religiosa |
| Grus vipio |
| Guarouba guarouba |
| Guttera pucherania pucherania |
| Gymnorhina tibicen |
| Gyps fulvus |
| Haliaeetus leucocephalus |
| Hieraaetus pennatus |
| Himantopus himantopus |
| Himantopus mexicanus |
| Ixobrychus minutus |
| Lamprotornis caudatus |
| Lamprotornis chalybaeus |
| Lamprotornis chloropterus |
| Lamprotornis iris |
| Lamprotornis purpureus |
| Lamprotornis regius |
| Lamprotornis splendidus |
| Lamprotornis superbus |
| Lathamus discolor |
| Leiothrix lutea |
| Leptotila rufaxilla |
| Leptotila verreauxi |
| Leucopsar rothschildi |
| Leucosarcia melanoleuca |
| Lonchura atricapilla |
| Lonchura bicolor |
| Lonchura castaneothorax |
| Lonchura cucullata |
| Lonchura griseicapilla |
| Lonchura maja |
| Lonchura malabarica |
| Lonchura malabarica |
| Lonchura malacca |
| Lonchura molluca |
| Lonchura nevermani |
| Lonchura striata domestica |
| Lophocroa leadbeateri |
| Lophophorus impeyanus |
| Lophospingos pusillus |
| Loris Arco-Iris |
| Loris fuscata |
| Loris mitchell |
| Loris molucanos |
| Loris reticulata |
| Lorius chlorocercus |
| Lorius garrulus |
| Lorius hypoinochrous |
| Lorius lory |
| Lybius dubius |
| Melopsittacus undulatus |
| Merops apiaster |
| Metriopelia ceciliae |
| Mino dumontii |
| Monticola saxatilis |
| Musophaga rossae |
| Musophaga violacea |
| Mycteria ibis |
| Myiopsitta monachus |
| Nandayus nenday |
| Neochmia ruficauda |
| Neochmia temporalis |
| Neophema bourkii |
| Neophema chrysostoma |
| Neophema elegans |
| Neophema pulchella |
| Neophema splendida |
| Neophema tourquoisine |
| Neopsephotus bourkii |
| Nitycorax nitycorax |
| Northiella haematogaster |
| Numida meleagris |
| Nymphicus hollandicus |
| Ocyphaps lophotes |
| Oena capensis |
| Onychognathus morio |
| Oratrix magna |
| Oreortyx pictus |
| Oriolus oriolus |
| Orthopsittaca manilatus |
| Oryzoborus crassirostris |
| Otus scops |
| Padda fuscata |
| Padda oryzivora |
| Parabuteo unicinctus |
| Paroaria capitata |
| Paroaria coronata |
| Paroaria dominicana |
| Parus caeruleus |
| Passerina ciris |
| Passerina cyanea |
| Pauxi pauxi |
| Pavo cristatus |
| Phapitreron leucotis nigrorum |
| Phaps chalcoptera |
| Pica pica |
| Piezorinha cinerea |
| Pinicola Enucleator |
| Pionites leucogaster |
| Pionites leucogaster xanthomerius |
| Pionites melanocephala |
| Pionopsitta pileata |
| Pionus chalcopterus |
| Pionus fuscus |
| Pionus maximiliani |
| Pionus menstruus |
| Pionus senilis |
| Pipile cumanensis |
| Platycercus adelaideae |
| Platycercus adscitus |
| Platycercus caledonicus |
| Platycercus elegans |
| Platycercus eximius |
| Platycercus flaveolus |
| Platycercus icterotis |
| Platycercus pallicep |
| Platycercus venustus |
| Plegadis falcinellus |
| Podargus strigoides |
| Poephila acuticauda |
| Poephila bichenovili. |
| Poephila cincta |
| Poephila personata |
| Poicephalus cryptoxanthus |
| Poicephalus gulielmi |
| Poicephalus jardine |
| Poicephalus meyeri |
| Poicephalus Robustus |
| Poicephalus rueppellii |
| Poicephalus Rufiventris |
| Poicephalus senegalus |
| Polyplectron bicalcaratum |
| Polyplectron chalcurum |
| Polyplectron germaini |
| Polyplectron inopinatum |
| Polyplectron napoleonis |
| Polytelis alexandrae |
| Polytelis anthopeplus |
| Polytelis swainsonii |
| Porphyrio porphyrio |
| Primolius couloni |
| Primolius Maracana |
| Propyrrhuna couloni |
| Propyrrhura auricollis |
| Psephotus chrysopterygius chrysopterygius |
| Psephotus dissimilis |
| Psephotus haematogaster |
| Psephotus haematonotus |
| Pseudeos fuscata |
| Psilopsiagon Aymara |
| Psittacara holochlorus |
| Psittacula alexandri |
| Psittacula cyanocephala |
| Psittacula derbiana |
| Psittacula eupatria |
| Psittacula himalayana |
| Psittacula krameri |
| Psittacula roseata |
| Psittacus erithacus |
| Psittacus erithacus erithacus |
| Psittacus erithacus princeps |
| Psittacus erithacus timneh |
| Psitteuteles goldie |
| Psitteuteles iris |
| Pternistis erckelii |
| Pteronetta hartlaubii |
| Ptilopachus petrosus |
| Ptilopsis leucotis |
| Puffinus pacificus |
| Pulsatrix perspicillata |
| Purpureicephalus spurius |
| Pycnonotus cafer |
| Pycnonotus jocosus |
| Pycnonotus leucogenys |
| Pycnonotus leucotis |
| Pyrrhula pyrrhula |
| Pyrrhura aurea |
| Pyrrhura cruentata |
| Pyrrhura egregia |
| Pyrrhura egregia |
| Pyrrhura emma |
| Pyrrhura frontalis |
| Pyrrhura griseipectus |
| Pyrrhura hypoxantha |
| Pyrrhura lepida |
| Pyrrhura leucotis |
| Pyrrhura melanura |
| Pyrrhura molinae |
| Pyrrhura molinae cinnamon |
| Pyrrhura molinae hypoxantha |
| Pyrrhura molinae pineapple |
| Pyrrhura perlata |
| Pyrrhura picta |
| Pyrrhura picta |
| Pyrrhura rhodocephala |
| Pyrrhura rhodogaster |
| Pyrrhura roseifrons |
| Pyrrhura rupicola |
| Pyrruhura leucogaster |
| Ramphastos sulfuratos |
| Ramphastos toco albogularis |
| Rosela platycercus eximius |
| Sarcops calvus |
| Senegal |
| Serinus atrogularis |
| Serinus atrogularis |
| Serinus atrogularis somereni |
| Serinus canaria |
| Serinus dorsostriatus |
| Serinus hypostictus |
| Serinus leucopygius |
| Serinus mozambicus |
| Serinus reichenows |
| Serinus striolatus |
| Serinus sulphuratus |
| Sicalis flaveola |
| Sittasomus griseicapillus |
| Spreo superbus |
| Stagonopleura guttata (or Emblema guttata) |
| Streptopelia capicola |
| Streptopelia chinensis |
| Streptopelia decaocto |
| Streptopelia decipiens |
| Streptopelia lugens |
| Streptopelia picturata |
| Streptopelia roseogrisea |
| Streptopelia semitorquata |
| Streptopelia senegalensis |
| Streptopelia turtur |
| Strix leptogrammica |
| Strix nebulosa |
| Struthio camelus |
| Sturnus pagodarum |
| Sturnus sinensis |
| Sturnus unicolor |
| Sturnus vulgaris |
| Taeniopygia guttata |
| Tangara cyanicollis |
| Tauraco erythrolophus |
| Tauraco fischeri |
| Tauraco hartlaubi |
| Tauraco leucolophus |
| Tauraco leucotis |
| Tauraco livingstonii |
| Tauraco persa buffoni |
| Tauraco Persa Persa |
| Tauraco porphyreolophus |
| Tauraco schalowi |
| Thalassornis leuconotus |
| Theristicus caudatus |
| Theristicus melanopis |
| Threskiornis spinicollis |
| Tockus erythrorrinchus |
| Tockus flavirostris |
| Tordo dissimilis |
| Trachyphonus darnaudii |
| Tragopan caboti |
| Treron calva |
| Treron wallia |
| Trichoglossus capistratus |
| Trichoglossus chlorolepidotus |
| Trichoglossus euteles |
| Trichoglossus haematodus |
| Trichoglossus haematodus haematodus |
| Trichoglossus haematodus caeruleiceps |
| Trichoglossus haematodus capistratus |
| Trichoglossus haematodus micropteryx |
| Trichoglossus haematodus mitchellii |
| Trichoglossus haematodus moluccanus |
| Trichoglossus haematodus moluccanus |
| Trichoglossus haematodus ornatus |
| Trichoglossus haematodus rubritorqui |
| Trichoglossus iris |
| Trichoglossus ornatus |
| Trichoglossus rubritorquis |
| Turdus iliacus |
| Turdus merula |
| Turdus philomelos |
| Turdus viscivorus |
| Turtur abyssinicus |
| Turtur afer |
| Turtur brehmeri infelix |
| Turtur chalcospilos |
| Tyto alba |
| Upupa epops |
| Uraenghitus angolensis |
| Urocissa erythrorhyncha |
| Vanellus armatus |
| Vanellus chilensis |
| Vanellus coronatus |
| Vanellus miles |
| Vanellus miles |
| Vanellus vanellus |
| Vini australis |
| Zenaida asiatica |
| Zenaida auriculata |
| Zenaida aurita |
| Zenaida graysoni |
Como fazer a recolha?
| Pena | Sangue | Casca de ovo |
|---|---|---|
|
- Encomende um kit de recolha gratuito ou faça o download e imprima o nosso kit ‘Print it Yourself’
- Lave as mãos com álcool antes de recolher a amostra para evitar contaminação. - Ao recolher amostras de várias aves, lave as mãos com álcool entre a recolha de amostras de aves diferentes. - Não toque nas penas após a recolha. - Arranque 4-5 penas com um tamanho médio e na fase inicial de crescimento, ou seja, quando a pena começa a surgir a partir do cálamo (fig.4). Evite o contacto direto entre as mãos e a região do cálamo. - Após a recolha, as penas devem ser colocadas dentro de um saco estéril (fig.2). Se a ave não tiver penas nesta fase de crescimento, pode arrancar algumas penas e aguardar até que as novas penas cresçam até à fase desejada. - As amostras de DNA da ave devem ser enviadas para a STAB VIDA no máximo até 5 dias após a recolha. - Pode armazenar as amostras num local fresco e seco enquanto aguarda. |
- Encomende um kit de recolha gratuito ou utilize papéis de recolha de sangue (por ex., papéis de filtro).
- Lave as mãos antes de recolher a amostra para evitar contaminação. - Ao recolher amostras de várias aves, lave as mãos com álcool entre a recolha de amostras de aves diferentes. - Não toque no sangue depois de o ter recolhido. - Corte a ponta da unha da ave (fig.3). - Extraia algumas gotas de sangue (3-5). - Também pode recolher aproximadamente 0,1 ml de sangue de cada ave com a ajuda de uma seringa estéril (utilize uma seringa para cada ave). Tubo: - Recolha-o no tubo com álcool (fig.1) fornecido no Kit. Papel: - Quando utilizar papel de filtro, coloque todo o sangue no mesmo local no centro do papel. - As amostras de DNA da ave devem ser enviadas para a STAB VIDA no máximo até 5 dias após a recolha. |
Encomende um kit de recolha gratuito
- Lave as mãos antes de recolher a amostra para evitar contaminação. - Não toque nas cascas dos ovos depois de as ter recolhido. - Recolha toda a casca do ovo da ave (fig.5) cujo sexo se pretende determinar, dentro das primeiras 24 horas após a eclosão. - Coloque a casca do ovo no tubo com álcool (fig.1) fornecido no Kit. - As amostras de DNA da ave devem ser enviadas para a STAB VIDA no máximo até 5 dias após a recolha. Atenção: se os ovos eclodirem ao mesmo tempo e se estiver a testar várias aves, evite misturar as cascas dos ovos. |
Cada amostra deve ter o número de identificação da ave ou uma identificação pessoal se a ave não estiver registada. Além disso, os dados relacionados com as suas aves devem ser incluídos no pedido de análise, assim como nos kits de teste.
As amostras não precisam de ser refrigeradas, mas devem ser armazenadas num local fresco e seco; no entanto, após a recolha, devem ser enviadas o mais rápido possível. Por favor, note que o envio deve incluir o pedido de análise.
A STAB VIDA não é responsável por quaisquer consequências que os resultados dos testes possam causar. A recolha e o envio das amostras são da responsabilidade de cada cliente.
